基因敲除株的制備過程

設計 gRNA

• 確定靶位點：根據要敲除的基因序列，選擇合適的靶位點。一般選擇基因的編碼區，尤其是起始密碼子附近或功能結構域所在區域，以確保敲除后能有效破壞基因功能。

• 設計 gRNA 序列：針對選定的靶位點，設計特異性的 gRNA 序列。gRNA 通常長度為 20 個左右的核苷酸，需與靶 DNA 序列精確互補配對，同時要避免與基因組中其他非靶區域有高度同源性，以減少脫靶效應。

構建表達載體

• 選擇載體：挑選適合的表達載體，如常用的質粒載體。載體應包含能在宿主細胞中啟動 gRNA 和 Cas9 蛋白表達的啟動子，以及篩選標記基因，如抗生素抗性基因，以便后續篩選陽性克隆。

• 插入 gRNA 和 Cas9 基因：將合成的 gRNA 序列和 Cas9 基因片段通過基因克隆技術插入到載體中，構建成完整的 CRISPR - Cas9 表達載體。

細胞轉染或轉化

• 轉染 / 轉化方法選擇：根據宿主細胞類型選擇合適的方法將表達載體導入細胞。對于動物細胞，常用的方法有脂質體轉染、電穿孔法等；對于細菌或酵母細胞，可采用化學轉化、電轉化等方法。

• 轉染 / 轉化操作：按照所選方法的操作規程進行實驗，將 CRISPR - Cas9 表達載體導入細胞。在導入后，載體進入細胞并在細胞內表達 gRNA 和 Cas9 蛋白，gRNA 引導 Cas9 蛋白識別并結合到靶基因位點。

篩選陽性克隆

• 初步篩選：利用載體上的篩選標記基因進行初步篩選。例如，使用含有相應抗生素的培養基培養細胞，只有成功導入表達載體并表達出抗性蛋白的細胞才能存活，從而得到初步篩選的陽性細胞克隆。

• 鑒定陽性克隆：通過 PCR 擴增靶基因區域，然后進行測序分析，確定是否在靶位點發生了基因編輯。只有在靶位點出現堿基缺失、插入或替換等突變，導致基因功能喪失的克隆，才是真正的基因敲除陽性克隆。

  
  

  
  

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單克隆培養與鑒定

• 單克隆分離：采用有限稀釋法或軟瓊脂平板法等，將篩選出的陽性細胞克隆進行單細胞分離培養，得到單個細胞衍生的克隆群體，確保每個克隆均來自單個基因敲除細胞。

• 進一步鑒定：對單克隆細胞進行再次鑒定，除了通過測序驗證基因敲除情況外，還可采用 Western blot、免疫熒光等方法檢測基因敲除后蛋白表達水平的變化，以確認基因敲除的效果。

動物模型制備（如需要）

• 胚胎注射：如果要制備基因敲除動物模型，如小鼠，可將 CRISPR - Cas9 系統注射到受精卵中。通過顯微操作技術，將含有 gRNA 和 Cas9 蛋白或 mRNA 的溶液注射到受精卵的原核或細胞質中，然后將注射后的受精卵移植到代孕母鼠的輸卵管中，讓其發育成胚胎。

• 基因敲除動物鑒定：待幼鼠出生后，通過提取鼠尾基因組 DNA，采用 PCR 和測序等方法鑒定基因敲除情況，篩選出基因敲除陽性的動物個體，即得到基因敲除株動物模型。

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